Teszt szöveg | ||
Az ön kosara üres.
2=1 Házas Misszió
Apologetica Könyvkiadó
Caeta Könyvkiadó
Danica Könyvkiadó
DE Magyarország a középkori Európában Kutatócsoport
Debreceni Egyetem Történelmi Intézet
Design Media Publishing
Egely
Erawan
Erdély Történeti Alapítvány
Fátyol Kiadó
Felsőbbfokú Tanulmányok Intézete
Filmtett Egyesület
Hermeneutikai Kutatóközpont
JATEPress (Szegedi Tudományegyetem kiadója)
JEL Könyvkiadó
JEL-Odigitria Kiadó
JEL-Sarutlan Kármelita Nővérek Magyarszék
JEL-Sarutlan Kármelita Nővérek Rendje, Marosszentgyörgy
Jézus Kistestvérei Női Szerzetes Közösség
Koinónia Kiadó
Lectum Kiadó 2008-ig
Magyar Képzőművészeti Egyetem
Martinus Kiadó
Maximus Kiadó
Napkelet Bölcseleti Iskola
Oander
Ős-Kép Kiadó
OSKAR Kiadó
Projectograph Kiadó
Prospero
Quintus Kiadó
Rézbong Kiadó
Sarutlan Kármelita Nővérek
Savaria exkluzív kiadványok
Savaria University Press
Szegedi Középkorász Műhely
Terebint Kiadó
Új Város Alapítvány
Universitas Kiadó
Zsaka Design
Miért becsült az ár?
Az ár azért becsült, mert a rendelés pillanatában nem lehet pontosan tudni, hogy a beérkezéskor milyen lesz a Forint árfolyama az adott termék eredeti devizájához képest. Ha a Forint romlana, kissé többet, ha javulna, kissé kevesebbet kell majd fizetnie.
Miért nem adják meg egészen pontosan a beszerzés időigényét?
A beszerzés időigényét az eddigi tapasztalatokra alapozva adjuk meg. Azért becsült, mert a terméket külföldről hozzuk be, így a kiadó kiszolgálásának pillanatnyi gyorsaságától is függ A megadottnál gyorsabb és lassabb szállítás is elképzelhető, de mindent megteszünk, hogy Ön a lehető leghamarabb jusson hozzá a termékhez.
|
Tartalomjegyzék:
ELŐSZÓ
1. KÖRNYEZET- ÉS NÖVÉNYANALITIKAI MÓDSZEREK
1.1. ATOMSPEKTROSZKÓPIAI VIZSGÁLATOK NÖVÉNY ÉS KÖRNYEZETI MINTÁK FÉMTARTALMÁNAK KIMUTATÁSÁRA
1.1.1. Atomspektroszkópiai módszerek áttekintése
1.1.1.1. Emissziós módszerek
1.1.1.2. Atomabszorpciós módszerek
1.1.1.3. Egyéb alkalmazható módszerek
1.1.2. A gyakorlat menete
1.1.2.1. Munkavédelmi előírások
1.1.2.2. Általános laboratóriumi alapműveletek
1.1.2.3. Mintavétel
1.1.2.4. Mintaelőkészítés
1.1.2.5. Minták tárolása
1.1.2.6. A gyakorlat leírása
1.2. HORMONOK ÉS STRESSZ-INDUKÁLTA SZERVES KOMPONENSEK KIMUTATÁSA KROMATOGRÁFIÁS MÓDSZEREKKEL
1.2.1. Kromatográfiás módszerek áttekintése
1.2.1.1. Gázkromatográfia
1.2.1.2. Folyadék-kromatográfia
1.2.2. A gyakorlat menete
1.2.2.1. Munkavédelmi előírások
1.2.2.2. Általános laboratóriumi alapműveletek
1.2.2.3. Mintavétel
1.2.2.4. Mintaelőkészítés
1.2.2.5. A gyakorlat leírása
1.3. STRESSZ HATÁSÁRA INDUKÁLÓDÓ GÉNEK VIZSGÁLATA NORTHERN HIBRIDIZÁCIÓS ANALÍZISSEL, ÖSSZ RNS IZOLÁLÁSA NÖVÉNYI SZÖVETEKBŐL
1.3.1. Bevezetés, tudományos háttér
1.3.2. A növényi RNS tisztítás fontosabb lépései
1.3.2.1. Feltárás
1.3.2.2. A nemkívánatos sejtalkotók eltávolítása
1.3.2.3. Az RNS újraoldása, OD mérés 260 és 280 nm-en
1.3.3. Az RNS minőségének ellenőrzése
1.3.4. Az RNS minták analizálása
1.3.4.1. Northern hibridizáció (RNS blottolás)
1.3.4.2. „Dot” és „slot” hibridizáció
1.3.4.3. A „filter” hibridizáció
1.3.4.4. RNS térképezés S1 nukleáz vagy ribonukleáz felhasználásával
1.3.4.5. In situ hibridizáció
1.3.5. A gyakorlat menete
1.3.5.1. Előkészítés
1.3.5.2. Az RNS-kivonás menete: módosított fenol/SDS eljárás
1.3.5.3. RNS koncentráció meghatározása fotométerrel
1.3.5.4. Az RNS minták ellenőrzése
1.3.6. Függelék
1.3.6.1. Az 1%-os agarózos gél készítése
1.3.6.2. Gélelektroforézis
1.3.6.3. Az RNS kivonásához szükséges felszerelés, eszközök, műszerek listája
1.3.6.4. A szükséges vegyszerek, oldatok
1.3.6.5. RNáz mentesítés
1.3.7. Felhasznált irodalom
2. MEMBRÁN ÉS TRANSZPORTFOLYAMATOK NÖVÉNYEKBEN
2.1. A NÖVÉNYI ANYAGTRANSZPORT ALAPJAI
2.1.1. Passzív és aktív transzport
2.1.2. Iontranszport membránon keresztül
2.1.3. A H+ elektrokémiai gradiense: a kemiozmotikus mechanizmus
2.1.4. A növényi membránon keresztüli transzport mechanizmusai
2.1.4.1. Diffúzió, transzporterek, csatornák
2.1.4.2. A növényi ATP szintáz és ATPáz mechanizmusok. Az elsődleges, elektrogén proton pumpa
2.1.4.3. H+–ATPázok, pirofoszfatáz és redox rendszer
2.1.5. A növényi iontranszport
2.1.5.1. Ionfelvételi kinetikai modellek
2.1.5.2. Iontranszport izolált vezikulákkal: H+-transzport és a másodlagos rendszerek
2.1.5.3. Az ionfelvétel és transzlokáció szelektivitása
2.1.6. Felhasznált irodalom
2.2. AZ IZOTÓPOS NYOMJELZÉSES TECHNIKA BIOLÓGIAI ALKALMAZÁSA. AZ IONTRANSZPORT KINETIKAI VIZSGÁLATA
2.2.1. Radiokémiai alapismeretek áttekintése
2.2.1.1. Alapfogalmak
2.2.1.2. Radioaktivitás
2.2.1.3. Radioaktív átalakulások: α-, β- és γ-bomlások
2.2.1.4. Természetes radioaktív izotópok
2.2.1.5. Magreakciók
2.2.2. Radioaktív vegyületek alkalmazása
2.2.2.1. Izotópok analitikai alkalmazásának áttekintése
2.2.2.2. Minta előkészítése α-, β- és γ-sugárzás mérésére
2.2.2.3. Minták aktivitásának mérése, detektálás
2.2.2.4. Sugárzás elleni védekezés
2.2.3. Nukleáris környezetvédelem
2.2.4. Nyomjelzős technikai módszerek sugárzó és stabil izotópokkal
2.2.5. A káliumfelvétel és -transzport vizsgálata izotóp technikával
2.2.5.1. A gyökér K+ felvételi mechanizmusai
2.2.5.2. Gyakorlat: a gyökér K+ felvételének vizsgálata radioizotópos nyomjelzéses technikával
2.3. A TRANSZPORT MOLEKULÁRIS MECHANIZMUSA: MEMBRÁNCSATORNÁK VIZSGÁLATA PACTH CALMP TECHNIKÁVAL
2.3.1. A növényi elektrofiziológia rövid története
2.3.2. A voltage clamp és a patch clamp technika
2.3.2.1. Patch-modellek
2.3.2.2. Szűrési eljárások
2.3.2.3. A digitális jelfeldolgozás
2.3.2.4. A jelanalízis lépései
2.3.2.5. Elektromos kettősrétegek a seal kialakulása előtt és után
2.3.3. Növényi ioncsatornák
2.3.3.1. Az ioncsatornák azonosítása
2.3.3.2. Ioncsatorna modellek
2.3.4. Növényi csatornák ionpermeációs modelljei
2.3.4.1. I/V görbék állapot modellje
2.3.4.2. Az ionforrás és az írisz modell
2.3.4.3. Az ion-ion kölcsönhatások fizikai modelljei
2.3.4.4. Felületi töltések és lefedésük (screening)
2.3.5. Az exo- és endocitózis mérése patch clamp technikával
2.3.5.1. A membránkapacitás és a plazmamembrán területének kapcsolata
2.3.5.2. Időfüggő kapacitásmérés teljes sejtmembránon
2.3.5.3. Az exocitózis és az endocitózis különválasztása
2.3.5.4. Az exocitózis szabályozása
2.3.6. A csillárkamoszatok, mint a növényi sejtek elektrofiziológiai tanulmányozásának eszközei
2.3.6.1. A permeabilizált sejtmodell és az intracelluláris perfúzió
2.3.6.2. Az elektrogenezis mechanizmusa a plazmamembránban
2.3.6.3. Ingerlékenység
2.3.6.4. Akciós potenciál a plazmamembránban
2.3.6.5. A csatornák szabályozása
2.3.6.6. A repolarizáció mechanizmusa
2.3.6.7. A vakuólum membránpotenciálja
2.3.6.8. Akciós potenciál a vakuólumban
2.3.6.9. A fotoszintézis szerepe a plazmamembrán potenciáljának szabályozásában
2.4. A FLOEM MOBILIS FEHÉRJÉINEK VIZSGÁLATA
2.4.1. Bevezetés
2.4.2. A kísérlet tárgya: a floem
2.4.2.1. A rostacső elem
2.4.2.2. A kísérősejtek
2.4.2.3. A P-proteinek
2.4.2.4. A floem exudátum (rostacső nedv)
2.4.3. Kísérletek – anyagok – módszerek
2.4.3.1. A növényi anyag
2.4.3.2. Floemexudáció: rostacső nedv gyűjtése csíranövényből
2.4.3.3. Elektroforetikus eljárások
2.4.3.4. Izoelektromos fókuszálás (IEF)
2.4.3.5. Kétdimenziós poliakrilamid gél elektroforézis (2D)
2.4.3.6. Fehérjék elektroforetikus transzfere NC, PVDF membránra
2.4.4. További lehetőségek – ha már vannak izolált, tiszta fehérjéink
2.4.4.1. Western-blot
2.4.4.2. Poliklonális antitestek előállítása
2.4.4.3. Foszforilált fehérjék és protein-kináz enzimaktivitás detektálása
2.4.4.4. N-terminális aminosav szekvencia meghatározása
2.4.4.5.A fehérjék szintézise: [35S]-L-metionin felvétele
2.4.5. Utószó
Weboldalunkon cookie-kat (sütiket) használunk, melyek célja, hogy teljesebb körű szolgáltatást nyújtsunk látogatóink részére. Tudjon meg többet Elfogadom